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MP 课堂 | 多款饮食诱导非酒精性脂肪肝病动物模型案例

5792 人阅读发布时间:2021-06-11 14:29

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过去的一年您是不是奉旨宅家贴了春夏秋冬膘?体检过后突然发现身边一群小伙伴患了肝浸润?也许很多人会认为,只要不饮酒那么自己的肝脏就不会有多大损伤。那当然是 No, No, No~

脂肪在肝细胞中堆积到一定量时,非酒精性脂肪性肝(NAFLD)就出现了。相对于酒精性肝病来说,NAFLD 的发病率正以惊人的数目增长着,80% 的肥胖患者患有 NAFLD,而 BMI 指数正常的人群中也有 16% 的人患有此病。

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NAFLD 目前尚缺有效的治疗方法,动物模型是研究 NAFLD 发病机制以及新药开发的重要平台。遗传和环境因素在肥胖的发生中起重要作用,食是诱导肥胖及相关代谢疾病的主要环境因素之一。下面小编就分享几款饮食诱导的 NAFLD 动物造模案例吧~
 

【 高脂饮食(HFD) 】

HFD 诱导动物 NAFLD 与人类 NAFLD 发病机制接近,可引起增重、肥胖、胰岛素抵抗等。但在实验过程中,造模时间较长,症状较轻。与 MCD 相同喂养时间里,只能诱导温和的脂肪变性和炎症。此外,不同品种和性别的实验动物可能会对模型的建立造成影响。HFD 模型诱导小鼠肝脂肪并不一定是线性增长,可能出现先降低后增长的现象。

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正常喂食小鼠(图左),HFD 喂食小鼠(图右)



案例一:C57BL/6J 小鼠 + HFD[1]

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实验表现
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喂食 16 周后,与人类患者相似,小鼠体重异常增加(图 A),肝脏甘油三酯异常积累(图 C)。
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进一步通过油红染色,确认高脂饮食诱导小鼠表现出广泛脂肪浸润(图 A,红色部分)。

 
【 蛋氨酸和胆碱缺乏饮食(MCD) 】
MCD 可以非常迅速诱导可测量的 NAFLD 标志,4-8 周内即可诱导包括纤维化在内的 NASH 表型,这是其他模型难以达到的效果。在减缓脂肪肝发展和逆转脂肪肝疾病研究中广受欢迎。

 

但与 NAFLD 人类疾病患者常伴胰岛素抵抗、肥胖等代谢综合征不同,该模型诱导动物通常伴随体重下降,且不具备胰岛素抵抗。因此,难以将该模型得到的动物发病机制延伸到人类发病机制中去。


案例二:成年雄性 Wistar 大鼠 + MCD[2]
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实验表现
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与人类患者通常伴随肥胖症状不同,MCD 喂食小组体重从第七天开始出现异常下降。
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短时间内表现出与人类 NASH 患者相似病理组织状态。喂食 4 周,所有肝脏出现脂肪浸润。喂食 13 周,出现更广泛的脂肪变性,还有炎症、肝细胞坏死、纤维化出现。

【 高果糖饮食(HFr) 】
高果糖饮食可诱导小鼠肝脏脂质新生,胰岛素抵抗、脂肪变性、炎症、纤维化,与人类 NASH 患者具有相似表型,但该模型诱导的动物体重增长较 HFD 模型少,可以结合高脂饮食及高胆固醇饮食一起使用。

案例三:雄性 SD 大鼠 + MCD[3]
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实验表现
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两组体重在 2 周时无明显差异,但从喂食第 6 周开始出现差异,喂食 12 周时体重出现较显著差异。

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随着诱导时间延长,NASH 表型逐渐加重,依次出现脂肪变性、肝细胞膨胀、纤维化等表型。

 
【 胆碱缺乏-高脂饮食(CD-HFD) 】
胆碱缺乏饮食与高脂饮食相结合,能够解决单一饲料所引起的实验造模不足问题,不仅可以诱导肥胖、胰岛素抵抗、脂肪变性、炎症、纤维化等 NASH 表型,甚至可以诱导肝癌细胞的产生。

案例四:C57BL/6J 小鼠 + CD-HFD[4]
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实验表现
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喂养小鼠在两个月龄时,较对照组体重明显增长,并持续增大(图 A)。10 月龄时,进一步检测脂肪与瘦体重变化,脂肪较对照组显著增长,而瘦体重无明显变化(图 B)。

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CD-HFD 小鼠肝脏中甘油三酯沉积在鼠龄六个月出现显著增加,并且持续增长;苏丹红对脂肪进行染色,随时间推移肝脂肪变性由轻度变性变为重度变性

 
【  MP 动物饲料 】

不同方法制备的脂肪肝动物模型的表型和形成机制各异,应尽量选择与人类 NAFLD 相似、方法简单、成功率高、动物死亡率低、造模时间短和重复性好的实验模型。

 

MP Biomedicals 拥有超过 50 年的定制经验,饲料配方丰富,原料严格把控,产品新鲜制作,可为客户定制任何饲料的公司。文中提到的非酒精性脂肪肝病动物模型并非详尽无遗,如果您的研究需要用到定制配方,欢迎来电咨询我们。
 

【 订购信息 】

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注:常用包装规格为 10 kg、20 kg、50 kg,上述表中均为 10 kg 的饮食诱导非酒精性脂肪肝造模相关产品货号。带 * 的产品分常规款和辐照款可供选择,MP Biomedicals 也可根据您的要求定制。
 

相关文献

1.Flores-CostaR, Alcaraz-Quiles J, Titos E, López-Vicario C, Casulleras M, Duran-Güell M,Rius B, Diaz A, Hall K, Shea C, et al. The soluble guanylate cyclase stimulatorIW-1973 prevents inflammation and fibrosis in experimental non-alcoholicsteatohepatitis. Br J Pharmacol 2018;175(6):953–67.

2.Weltman MD, Farrell GC, Liddle C. Increased hepatocyte CYP2E1 expression in arat nutritional model of hepatic steatosis with inflammation. Gastroenterology.1996; 111:1645–53.

3.SvendsenP, Graversen JH, Etzerodt A, Hager H, Roge R, Gronbaek H, Christensen EI,Moller HJ, Vilstrup H, Moestrup SK. Antibody-directed glucocorticoid targetingto CD163 in M2-type macrophages attenuates fructose-induced liver inflammatorychanges. Mol Ther Methods Clin Dev 2017;4:50–61.

4.Wolf MJ, Adili A, Piotrowitz K, Abdullah Z, Boege Y, Stemmer K, Ringelhan M,Simonavicius N, Egger M, Wohlleber D, et al. Metabolic activation ofintrahepatic CD8+ T cells and NKT cells causes nonalcoholic steatohepatitis andliver cancer via cross-talk with hepatocytes. Cancer Cell 2014;26(4):549–64.

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